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Nature | TCR特异性识别pMHC的结构分析

慕羽 生物药论 2023-12-01
可溶性双特异性T细胞重定向融合蛋白(ImmTAC)被FDA批准用于转移性葡萄膜黑色素瘤以来,有关TCR的研究越来越多。T细胞受体(TCR)对抗原肽MHC(pMHC)分子的识别引发了T细胞介导的免疫反应,结构表征是理解TCR-pMHC特异性相互作用,和为关联治疗学发展提供信息的关键。迄今为止报道的TCR-pMHC复合物的结构大多都是通过生成可溶性胞外结构域的X射线衍生技术确定的。尽管在工程蛋白结构、表达策略和结晶优化方面取得了进展,但这些复合物的成功表达结晶仍然是一项艰巨的任务。近年来单粒子冷冻电镜(CryoEM)迅速发展可用于TCR-CD3和pMHC复合物的表征,这里将报告两种α/βTCR-CD3复合物的冷冻电镜结构,它们可识别HLA-A2限制性肿瘤相关抗原MAGE-A4(230–239)。还关注了在没有TCR的情况下,含有MAGE-A4(230–239)肽和相关的MAGE-A8(232–241)肽的pMHCs的冷冻电镜结构,这为TCR特异性识别MAGE-A4提供了结构解释,这些发现为TCR识别临床相关的癌症抗原提供了见解,并证明了冷冻电镜在TCR-pMHC相互作用的高分辨率结构分析中的实用性
TCRs通常表达为α/β或γ/δ链的异二聚体,与下游传导信号的三种CD3二聚体(CD3εδ、CD3εγ、CD3ζζ)形成复合物,将近25年的晶体学研究揭示了TCR-pMHC识别的结构基础及其与T细胞免疫反应的关系,其中TCR每条链上的三个互补决定区(CDR)与pMHC分子结合,CDR1和CDR2环主要与MHC分子相互作用,CDR3环与MHC嵌入肽结合,控制抗原识别引发免疫反应。阐明抗原特异性的结构基础对具有治疗潜力的TCRs非常重要在一项临床试验中,识别MAGE-A3的TCR-T细胞疗法对源于Titin的肽(在心脏中表达)交叉反应性导致两人死亡[Cardiovascular toxicity and titin cross-reactivity of affinity-enhanced T cells in myeloma and melanoma]。随后的结构研究表明,尽管在9个残基中的4个残基处存在序列差异,但Titin肽在MHC凹槽内与MAGE-A3肽的构象密切相似,这最终导致了TCR交叉反应。原则上,结构信息可以通过促进脱靶肽的预测和引导增强TCR-pMHC相互作用的结构来提高基于TCR治疗的安全性和有效性。
结果
全长PN45545 TCR-CD3的CryoEM结构
从用MAGE-A4(230–239)肽免疫的人源化VelociT小鼠中分离出两个α/βTCR,PN45545和PN45428。首先侧重研究了PN45545,在HEK293细胞中表达了全长PN45545 TCR-CD3εδγζ复合物并纯化。确定PN45545 TCR-CD3复合物的冷冻电镜结构为3.0 Å分辨率(图1a,b)。在TCRα(N58,N150,N184,N195)、TCRβ(N84,N107,N184)、CD3δ(N38,N74)和CD3γ(N52,N92)上鉴定了N-连接的聚糖密度(图1b),在TCRβ、CD3γ和CD3ζ亚基的TM螺旋之间存在脂质密度,由于其形状且存在纯化缓冲液中,我们将其命名为半琥珀酸胆固醇酯(CHS)(图1a,c)。CD3亚基的细胞质尾部在冷冻电镜图中没有被解析,可能是由于灵活性。TCR恒定区和CD3亚基的结构和排列几乎与之前发表的TCR-CD3复合物结构相同。然而,TCR可变区和恒定区之间的转角略有不同,可能因其具有不同的Vα/Vβ序列(图1c–e)。结合之前不同α/βTCR的冷冻电镜研究,这些表明PN45545 TCR-CD3复合物结构支持TCR-CD3的整体结构和组装不受TCR可变区序列差异影响的观点。
图1  PN45545-TCR CD3复合物的冷冻电镜结构
全长PN45545和PN45428的TCR-CD3复合物与HLA-A2/MAGEA4(230–239)的冷冻电镜结构
为了深入了解MAGE-A4(230–239)肽能被两种不同的TCR识别的结构基础,确定了与全长PN45545和PN45428 TCR-CD3复合物连接的HLA-A2/β2M/MAGE-A4(230-239)(以下称为MAGEA4-pMHC)的冷冻电镜结构分辨率分别为2.7和3.3 Å(图2)。这些结构是用抗β2M单克隆抗体2M2的Fab片段存在的情况下测定的,其被用作基准标记以增强MAGEA4-pMHC的冷冻EM信号(图2a,d)。冷冻电镜图显示了MAGE-A4肽和附近区域的清晰侧链密度,从而能够精确地建立模型并评估TCR-pMHC表面氨基酸水平的相互作用(图2b,e)。当比较连接和未连接的PN45545 TCR-CD3结构时,唯一不同的是CDR区域。
图2  TCR-CD3与MAGEA4-pMHC复合物的冷冻电镜结构
PN45545和PN45428的整体TCR-pMHC结合方向遵循典型对接极性,其中Vα区域定位于HLA-α2Vβ区域定位于HLA-α1(图2c,f)。然而,两种TCR以不同的结合模式与pMHC结合,其特征在于PN45545和PN45428的对接角度分别为45°和94°(图2c,f,g)。尽管PN45545和PN45428具有不同的对接角度,但它们都与MAGEA4-pMHC结合,使得CD8αβ的Ig结构域C末端将朝向T细胞膜,有利于TCR/CD3/CD8的顺式构型和pMHC/CD8的反式结合,这一结果说明了共受体的结合可以约束适应一系列TCR/pMHC结合角度。尽管它们的对接角和CDR序列是不同的(图3a),但两种TCR的结合足迹都向MAGE-A4肽的N末端移动(图3b–e)。在这两种情况下,TCR结合(4 Å原子间距离)仅限于肽残基D4、G5和R6,而突起暴露肽(E7-V10)的C末端部分没有结合,这表明它在TCR识别中没有直接作用,该肽的N-末端部分和临近的HLA区域在人类和人源化小鼠模型中可能具有免疫优势。
图3  TCR-MAGEA4-pMHC相互作用
PN45545和PN45428的肽结合主要由β链CDR3介导。在PN45545 TCR 存在时,CDR3β残基F95和Y99分别与肽残基R6和D4产生明显的阳离子-π和氢键相互作用,CDR3β中的其他残基也与肽残基G5发生范德华相互作用。CDRs 1α(S31)和3α(G97)为肽D4提供了额外的结合(图3d)。对于PN45428,CDR3β的E103与肽R6形成盐桥(氢键的一种),而CDR3β中的其他残基结合肽G5和R6的骨架原子。PN45428 α链残基R31和N97分别与肽D4形成盐桥和极性相互作用(图3e)。两种结构中的肽构象除了通过特定TCR特异性相互作用稳定的不同R6侧链旋转异构体外几乎相同(图3f)。
TCR识别高度相似的MAGE-A4和MAGE-A8之间的结构基础
识别HLA-A2/MAGE-A4(230–239)的TCR先前已表现出与MAGE-A8(232–241)具有类似的HLA-A2限制性肽的交叉反应。MAGEA4(230–239)和MAGEA8(232–241)肽的区别仅在于两个保守取代(V2L和T9S),其中V2L被掩埋,T9S表面适度暴露。为了评估MAGE-A4/MAGE-A8对PN45545和PN45428的交叉反应性,首先在原代人T细胞中表达TCR,并用pMHC四聚体试剂通过流式细胞术进行分析。有趣的是,PN45428显示出与HLA-A2/MAGE-A8(232–241)的结合,与HLA-A2/MAGE-A4(230–239)有较低程度的结合(图4a)。然而,对于PN45545,没有检测到HLA-A2/MAGE-A8的结合信号。为了证实PN45428对MAGE-A8抗原的亲和力降低,使用稳态表面等离子体共振(SPR)检测洗涤剂溶解的PN45428 TCR-CD3和MAGEA4/MAGEA8-pMHC的结合亲和力(图4b,c),与MAGE-A8相比,PN45428对MAGE-A4高出约10倍的亲和力PN45445对MAGE-A4表现出约70倍的亲和性,这与通过流式结果中PN45545 TCR的更高特异性一致(图4a)。
图4  与MAGEA8-pMHC相比,TCR与MAGEA4-pMHC的优先结合
为了研究两个取代(V2L和T9S)中哪一个负责TCRs优先结合MAGE-A4而不是MAGE-A8,通过流式检测了单取代肽V2L或T9S的pMHC四聚体与表达PN45545或PN45428 TCRs的Jurkat细胞的结合(图6)。结果显示相较野生型MAGE-A4肽,V2L突变显示出与PN45545的结合可忽略不计,并且与PN45428的结合减少。T9S突变显示PN45545和PN45428的结合水平与野生型MAGE-A4相似。因此,TCRs对HLA-A2/MAGE-A8的亲和力降低可归因于V2L残基取代。两种TCR对MAGEA4(230–239)比对MAGEA8(232–241)的特异性高不能通过PN45545或PN45428的肽结合模式直接解释(图3b–e),因为不同的两个残基都不与TCR结合。为了进一步研究这两个肽表位之间的结构差异,我们在没有TCR的情况下对MAGEA4和MAGEA8-pMHCs进行了冷冻电镜分析。使用单链二硫键稳定的pMHC,并将抗β2M抗体2M2的Fab片段作为基准添加到样品中,以增强冷冻电镜EM信号处理。3.4 和3.1 Å分别获得了MAGEA4和MAGEA8-pMHCs的Å分辨率重建(图5a,b),图谱充分解析确定HLA嵌入肽的构象,中心R6残基的侧链没有很好地分解,这与其在没有TCR的情况下的柔韧性一致。MAGEA4和MAGEA8肽的结构高度相似(图第5c)印证了它们的保守序列高度相似。最显著的差异出现在残基D4处,在MAGE-A4肽中D4侧链向下投射到HLAα2螺旋而在MAGE-A8肽中它向上突出,远离HLA凹槽,似乎与HLA-α1处的R65侧链形成盐桥相互作用(图5 d–f)。不同的D4构象可归因于V2L位的取代,MAGEA8中较粗的亮氨酸侧链导致肽骨架的轻微重塑,这有利于肽D4/HLA R65盐桥的形成。
图5  MAGEA4和MAGEA8-pMHCs与2M2-Fab复合物的冷冻电镜结构
MAGEA4和MAGEA8-pMHCs的结构表明残基D4的不同构象是TCR特异性区分的关键。事实上,两种TCR都与肽D4侧链进行多次接触,此外,两种TCR通过CDR2β中的残基与HLA-A2α1螺旋基R65直接相互作用。对于PN45545,来自CDR2β的Y50似乎与R65形成阳离子-π相互作用(图5g),而在PN45428中,来自CDR1β的E52与R65产生静电相互作用(图5h)。这些相互作用可能使得HLA-A2/MAGEA8的结合受到损害。总之,这些结构数据表明,两种TCR对MAGE-A4的优先结合可能是由于相互作用,这些相互作用要求肽D4残基处于向下的构象,使其不与HLA残基R65相互作用。MAGE-A8若要形成与MAGE-A4同样的肽构象将需要破坏D4-R65盐桥(图5f),这在能量上可能是不利的。
图6  表达PN45545或PN45428 TCR的Jurkat与MAGEA4和MAGEA8-pMHC四聚体的流式分析






讨论

在这里证明了CryoEM可以对TCR-pMHC识别产生高分辨率的见解,利用冷冻电镜展示了TCRs如何在含有CD3亚基的全长信号复合物的背景下与pMHC结合,从而可以评估抗原和T细胞受体的相对位置,分析其特异性结合的潜在机制,这在使用可溶性TCRs晶体进行结构测定时是不可能的。总的来说,CryoEM在TCR-pMHC识别结构研究中的应用,可以加速TCR机理研究的进展,并有助于癌症免疫疗法的发展。



参考文献:
[1]Structural analysis of cancer-relevant TCR-CD3 and peptide-MHC complexes by cryoEM.Nature Communications.2401 (2023).


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